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Taq DNA Polymerase說明書
貨號：K0680
保存條件：-20℃保存。
組分說明
Cat. No. K0680 K0680E K0680F
Kit Size 500 U 6×500 U 5×2000 U
Taq DNA Polymerase, 5 U/μl 100 μl 6×100 μl 5×400 μl
10×Taq PCR Buffer with Mg2+ 2×1 ml 3×5 ml 8×5 ml
注意：本產(chǎn)品的10×Taq PCR Buffer中含有15 mM鎂離子。
產(chǎn)品簡介
Taq DNA Polymerase是通過大腸桿菌表達純化的重組酶。其基因來源于Thermus
aquaticus polymerase。該蛋白分子量為94 kDa，具有5′→3′ DNA聚合酶活性和5′→3′外切核酸酶活性，無3′→5′外切核酸酶活性，擴增得到的PCR產(chǎn)物3′端附有一個“A"堿基，因此可直接用于 T/A克隆。本產(chǎn)品具有延伸速度快、擴增效率高的特點，主要適用于PCR法擴增DNA片段、DNA序列測定等實驗。
活性定義
用活性化的大馬哈魚精子DNA作為模板/引物，在74℃，30分鐘內(nèi)，將10 nmol脫氧
核苷酸摻入到酸性不溶物質(zhì)所需的酶量定義為1個活性單位（U）。
質(zhì)量控制
經(jīng)過多次柱純化， SDS-PAGE檢測其純度大于99%；經(jīng)檢測無外源核酸酶活性；
PCR方法檢測無宿主殘余DNA；能有效地擴增人基因組中的單拷貝基因；室溫存放一
個月，無明顯活性改變。
本產(chǎn)品僅供科研使用，請勿用于臨床診斷及其他用途
使用方法
以下舉例為常規(guī)PCR反應體系和反應條件，實際操作中應根據(jù)模板、引物結(jié)構(gòu)和目的
片段大小不同進行相應的改進和優(yōu)化。
1. PCR反應體系
試劑 50 μl體系 終濃度
10×Taq PCR Buffer with Mg2+ 5 μl 1×
dNTP Mix，2.5 mM each 4 μl 200 μM each
Forward Primer，10 μM 2 μl 0.4 μM
Reverse Primer，10 μM 2 μl 0.4 μM
Template DNA <1 μg <1 μg/reaction
Taq DNA Polymerase，5 U/μl 0.25 μl
RNase-Free Water up to 50 μl
注意：1）引物濃度請以終濃度0.1-1.0 μM作為設定范圍的參考。擴增效率不高的情況下，可提高引物的濃度；發(fā)生非特異性反應時，可降低引物濃度，由此優(yōu)化反應體系。
2）鎂離子濃度請以終濃度1.5-3 mM作為設定范圍的參考。本產(chǎn)品的10×PCR Buffer中已經(jīng)含有15 mM鎂離子，可根據(jù)不同的引物對和模板來調(diào)節(jié)鎂離子濃度，由此優(yōu)化反應體系。
2. PCR反應條件
步驟 溫度 時間
預變性 94℃ 2 min
變性 94℃ 30 s
退火 55-65℃ 30 s 25-35個循環(huán)
延伸 72℃ 30 s
終延伸 72℃ 2 min
注意：1）一般實驗中退火溫度比擴增引物的熔解溫度Tm低5℃，無法得到理想的擴增效率時，適當降低退火溫度；發(fā)生非特異性反應時，提高退火溫度，由此優(yōu)化反應條件。
2）延伸時間應根據(jù)所擴增片段大小設定，本產(chǎn)品Taq DNA Polymerase的擴增效率為1 kb/30 s。
3）可根據(jù)擴增產(chǎn)物的下游應用設定循環(huán)數(shù)。如果循環(huán)次數(shù)太少，擴增量不足；如果循環(huán)次數(shù)太多，錯配機率會增加，非特異性背景嚴重。所以在保證產(chǎn)物得率的前提下應盡量減少循環(huán)次數(shù)。
3.結(jié)果檢測：反應結(jié)束后取5 µl反應產(chǎn)物，加入適量上樣緩沖液后，進行瓊脂糖凝膠電
泳檢測。
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